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검체채취방법

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조직병리 검사

세포유전 검사

  • 검체는 무균적으로 채취하며 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.
  • 검체 채취부터 배양까지 24시간 이내에 진행될 수 있도록 운송합니다. (검사 지연 시 냉장 상태로 보관)
  • 염색체 검사 의뢰서, 유전자검사 동의서를 기록하여 검체와 함께 보냅니다.
  • 태아를 대상으로 하는 염색체 검사는 검체 채취 전에 검사의 정확성 및 검사 한계에 대해
    환자나 보호자에게 충분히 설명하여 동의를 얻은 후에 검사를 시행하는 것이 바람직합니다.
말초 혈액 (Peripheral blood, PB)
  • Sodium heparin 용기에 혈액 5.0mL(소아 3.0mL)를 무균적으로 채취합니다. 응고된 검체는 검사가 불가능하며,
    Sodium heparin 이외의 항응고제는 세포 분열능 저하로 인하여 배양실패 확률이 높습니다.
  • 환자의 임상소견 및 추정 진단에 따라 검사 방법 자체가 달라지므로 반드시 의뢰서에 소견 및 진단명을 기록합니다.
  • 검체 채취부터 배양까지 24시간 이내에 진행될 수 있도록 운송합니다.
    (24시간 이내의 경우 세포분열능이 좋아 검사 소요일 내 보고율이 높으며, 24시간 이상일 경우 검사 실패 확률이 높음)
  • 검체 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.
골수 (Bone marrow, BM)
  • 혈액 종양에서는 세포 배양 시 혈액 검사 결과를 고려해서 적절한 세포수가 되도록 배양해야 하므로 귀 원에서 시행한 CBC결과를
    기록하거나 첨부하여 보냅니다.
  • 다른 사항은 말초혈액(Peripheral blood, PB) 검체의 준수사항과 동일하므로 위 내용을 참조하시기 바랍니다.
태아조직 (Production of conceptus, POC)
  • 태아 조직의 경우 오염될 확률이 매우 높아 주의가 필요합니다.
  • 무균적으로 채취한 조직을 본원에서 제공하는 전용 운송용 배지에 넣어 의뢰합니다.
  • 자궁 내에서 사망한지 24시간 이상이 경과한 검체는 배양에 실패할 확률이 높습니다.
양수 (Amniotic fluid)
  • 검체에 모체 세포가 혼입되는 것을 방지하기 위해 채취 시 처음의 소량(약 2.0mL 정도)은 반드시 버린 다음 약 20.0~30.0mL 정도의
    양수를 채취하여 50mL Conical tube로 옮겨 의뢰합니다.
  • ※ 결과 지연 및 배양 실패 이유
  • 혈액이 혼입되어 육안적으로 검체의 색깔이 붉거나 짙은 갈색인 경우
  • 양수 내 태아 유래 세포가 적은 경우(원심 후 침전물이 육안으로 확인이 안됨)
융모막 (Chorionic villi sampling, CVS)
  • 융모막 20~40mg을 채취하여 본원에서 제공하는 융모막 전용 운송용 배지에 넣어 의뢰합니다.
  • Zoom-stereo microscope로 관찰하여 순수한 융모막이 적을 경우에는 직접법, In Situ와 플라스크 방법을 병행할 수 없고,
    단지 플라스크 방법만을 시행하기 때문에 모체 세포의 오염 가능성이 높아지고 결과가 지연되거나 혹은 배양에 실패할 수도 있습니다.
제대혈 (Cord blood)
  • 제대혈 (Cord blood) 검체는 응고가 잘 되므로 채취 후 즉시 여러번 혼합하여 의뢰합니다.
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